Problema resuelto al detalle
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Treinta ciclos de PCR con eficiencia perfecta que convierten una molécula en mil millones 5 pasos
Treinta ciclos de PCR con una eficiencia perfecta convierten una molécula en mil millones. Deduce ese resultado y calcula después lo que cuesta una caída del 5 % en la eficiencia: la respuesta no es un 5 %.
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Cada ciclo copia cada hebra presente, de modo que la población se multiplica por 1 + e. Una eficiencia perfecta significa e = 1 y una duplicación exacta.
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Treinta duplicaciones suponen 2³⁰, aproximadamente 1,07 mil millones, a partir de una única molécula inicial. Esta es la razón fundamental por la que funciona la PCR: una cantidad demasiado pequeña para ser detectada pasa a ser demasiado grande para pasar desapercibida, en una sola tarde.
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El ciclo umbral invierte esa misma relación: es el ciclo en el que el recuento cruza por primera vez un umbral de detección. Se trata de un logaritmo, razón por la cual los valores de Ct se comparan mediante resta y por la que un ciclo equivale a un factor de dos.
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Si se reduce ahora la eficiencia a 0,95, cada ciclo multiplica por 1,95 en lugar de por 2. Tras treinta ciclos, el resultado es 5,02 × 10⁸.
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La razón es (2/1,95)³⁰: un déficit por ciclo del 2,5 %, compuesto treinta veces.
Respuesta
La herramienta muestra 1,07 × 10⁹ copias y Ct = 27. Una pérdida de eficiencia del 5 % cuesta un factor de 2,14, más de la mitad del rendimiento, porque la pérdida se multiplica treinta veces y no se suma una sola vez. Esa es la dificultad central de la PCR cuantitativa: la lectura es exponencial respecto a una magnitud —la eficiencia— que varía de una reacción a otra con el diseño de los cebadores, la pureza del molde y la propia uniformidad térmica del termociclador. Por ello, la qPCR se realiza siempre respecto a una curva estándar en lugar de confiar en ella como un recuento absoluto, y por ello un único inhibidor en la muestra puede parecer exactamente una menor cantidad de material de partida.
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Referencias (3)
- Cₜ, amplification efficiency and how the two are reported: S. A. Bustin et al., "The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments." Clinical Chemistry 55(4), 611–622, 2009.
- The real-time kinetic measurement the Cₜ readout models: R. Higuchi, C. Fockler, G. Dollinger and R. Watson, "Kinetic PCR Analysis: Real-time Monitoring of DNA Amplification Reactions." Nature Biotechnology 11(9), 1026–1030, 1993.
- The thermostable polymerase named in the third block: R. K. Saiki et al., "Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase." Science 239(4839), 487–491, 1988.