Problème entièrement résolu
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Trente cycles de PCR à efficacité parfaite transformant une molécule en un milliard 5 étapes
Trente cycles de PCR avec une efficacité parfaite transforment une molécule en un milliard. Démontrez cela, puis calculez ce qu'entraîne une baisse d'efficacité de 5 % — la réponse n'est pas 5 %.
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Chaque cycle copie chaque brin présent, de sorte que la population est multipliée par 1 + e. Une efficacité parfaite signifie e = 1 et un simple doublement.
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Trente doublements correspondent à 2³⁰, soit environ 1,07 milliard, à partir d'une unique molécule initiale. C'est toute la raison d'être de la PCR : une quantité trop faible pour être détectée devient trop grande pour être manquée, en une après-midi.
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Le cycle seuil inverse cette même relation — le cycle auquel le nombre de molécules franchit pour la première fois un seuil de détection. Il s'agit d'un logarithme, c'est pourquoi les valeurs de Ct sont comparées par soustraction et qu'un cycle correspond à un facteur deux.
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Réduisez maintenant l'efficacité à 0,95, de sorte que chaque cycle multiplie par 1,95 au lieu de 2. Après trente cycles, cela donne 5,02 × 10⁸.
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Le rapport est de (2/1,95)³⁰ — un déficit par cycle de 2,5 %, composé trente fois.
Réponse
L'outil affiche 1,07 × 10⁹ copies et Ct = 27. Une perte d'efficacité de 5 % coûte un facteur 2,14, soit plus de la moitié du rendement, car la perte est multipliée trente fois et non ajoutée une seule fois. C'est la difficulté centrale de la PCR quantitative : la mesure varie de façon exponentielle en fonction d'une grandeur — l'efficacité — qui varie d'une réaction à l'autre selon la conception des amorces, la pureté de la matrice et l'homogénéité thermique de l'appareil. C'est pourquoi la qPCR est toujours réalisée par rapport à une gamme d'étalonnage plutôt qu'acceptée comme un décompte absolu, et pourquoi un seul inhibiteur dans l'échantillon peut ressembler exactement à une quantité initiale plus faible.
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Références (3)
- Cₜ, amplification efficiency and how the two are reported: S. A. Bustin et al., "The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments." Clinical Chemistry 55(4), 611–622, 2009.
- The real-time kinetic measurement the Cₜ readout models: R. Higuchi, C. Fockler, G. Dollinger and R. Watson, "Kinetic PCR Analysis: Real-time Monitoring of DNA Amplification Reactions." Nature Biotechnology 11(9), 1026–1030, 1993.
- The thermostable polymerase named in the third block: R. K. Saiki et al., "Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase." Science 239(4839), 487–491, 1988.