Problema resolvido na íntegra
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Trinta ciclos de PCR com eficiência perfeita a transformar uma molécula em mil milhões 5 passos
Trinta ciclos de PCR com eficiência perfeita transformam uma molécula num milhar de milhão. Demonstre esse resultado e, em seguida, determine o custo de uma queda de 5% na eficiência — a resposta não é 5%.
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Cada ciclo copia todas as cadeias presentes, pelo que a população se multiplica por 1 + e. Eficiência perfeita significa e = 1 e uma duplicação direta.
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Trinta duplicações correspondem a 2³⁰, cerca de 1,07 milhar de milhão, a partir de uma única molécula inicial. Esta é a razão fundamental pela qual a PCR funciona: uma quantidade demasiado pequena para ser detetada torna-se demasiado grande para passar despercebida, numa única tarde.
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O ciclo de limiar inverte essa mesma relação — o ciclo no qual a contagem cruza pela primeira vez um limiar de deteção. É um logaritmo, razão pela qual os valores de Ct são comparados por subtração e por que razão um ciclo representa um fator de dois.
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Reduza agora a eficiência para 0,95, para que cada ciclo multiplique por 1,95 em vez de 2. Após trinta ciclos, o resultado é 5,02 × 10⁸.
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A razão é (2/1,95)³⁰ — um défice por ciclo de 2,5%, capitalizado trinta vezes.
Resposta
A ferramenta apresenta 1,07 × 10⁹ cópias e Ct = 27. Uma perda de eficiência de 5% custa um fator de 2,14, mais de metade do rendimento, porque a perda é multiplicada trinta vezes e não somada uma única vez. Essa é a dificuldade central da PCR quantitativa: a leitura é exponencial numa quantidade — a eficiência — que varia entre reações com o design dos iniciadores, a pureza do molde e a própria uniformidade térmica do equipamento. É por isso que a qPCR é sempre realizada em relação a uma curva de calibração em vez de ser aceite como uma contagem absoluta, e por que razão um único inibidor na amostra pode parecer exatamente menos material de partida.
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Referências (3)
- Cₜ, amplification efficiency and how the two are reported: S. A. Bustin et al., "The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments." Clinical Chemistry 55(4), 611–622, 2009.
- The real-time kinetic measurement the Cₜ readout models: R. Higuchi, C. Fockler, G. Dollinger and R. Watson, "Kinetic PCR Analysis: Real-time Monitoring of DNA Amplification Reactions." Nature Biotechnology 11(9), 1026–1030, 1993.
- The thermostable polymerase named in the third block: R. K. Saiki et al., "Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase." Science 239(4839), 487–491, 1988.